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Estudio coproparasitoscópico y hematológico en el Aguililla de Harris (Parabuteo Unicinctus) para uso en cetrería.
Escobedo Correa Oscar Orlando*
Cetrero desde 1992, MVZ egresado de la UAM-X especialista en reproducción y producción de fauna silvestre y animales convencionales, candidato al octorado en Ciencias Biológicas en la UAM-X.
Introducción
El presente trabajo describe de manera general estudios coproparasitológicos y hematológicos que puedan auxiliar a la conservación, de manera que puedan identificarse áreas en la que el Médico Veterinario deberá participar, para proponer soluciones a los problemas de manejo de fauna para la conservación de la diversidad biológica.
En la primera parte de este trabajo se pretende mostrar de manera general un análisis coproparasitológico el cual se tomará para la identificación de parásitos, tomando en cuenta alimentación, manejo e instalación del águililla de Harris.
En la segunda parte de este trabajo se muestra de manera general un estudio hematológico donde se pueda identificar y diferenciar células sanguineas así como alteraciones en las mismas. Con relación a los factores antes mencionados.
El acercamiento del médico veterinario zootecnista a los temas de conservación de los recursos naturales es una necesidad inaplazable en México, uno de los países con mayor biodiversidad en el mundo. Gran parte de la diversidad se pierde debido a los actos del hombre así como las enfermedades que son consideradas como la principal causa de mortalidad en todas las especies de la fauna silvestre, entre estas enfermedades se incluyen las parasitarias, infecciosas o nutricionales. (Suzán ,et al, 2002)
Que son consecuencia entre otros factores de altos índices de perturbación como deforestación y contaminación. Esto último además de alterar la salud de los animales, puede tener repercusiones severas en el mantenimiento de la diversidad y en la salud del ser humano con el propósito de lograr un mejor entendimiento de la dinámica de las enfermedades.
En áreas donde converge gran variedad de especies es necesario que se conozcan los factores ecológicos que pueden favorecer las tazas de transmisión de los agentes infecciosos al igual que las complicaciones que estas pueden tener en la conservación. (Nick, 2003) (Humphrey, 1978)
La aguililla de Harris pertenece a la familia Falconiformes del género Accipitridae la cual tiene relación en muchos ecosistemas en la república mexicana. (Ian, 1993)
El aguililla de Harris es un ave la cual se utiliza para cetrería en nuestro país, se emplean diferentes tiempos de captura, los cuales son: niegas, aves capturadas en el nido antes de completar su plumaje juvenil, pasajeros, aves capturadas con su plumaje juvenil cazando pero aún con dependencia de la familia, entremudados, aves capturados en el período de cambio de plumaje juvenil al adulto, zahareños, aves capturadas con el plumaje de adultos; si se desconoce la etapa de captura se puede determinar en el grado de improntación y la capacidad de cacería que muestra el ave.
La edad se determina con la coloración del plumaje en general y en particular la coloración rojiza del plumaje de los hombros, siendo más llamativo y con menos abundancia en los animales con mayor edad, así como su conducta en el momento de la cacería. (Aguilar,1993 Ian, 1993, Nick,2002, Pareja,1997, Humphrey,1978).
El águililla de Harris es una ave que caza y convive en familia, por tal motivo puede tener más problemáticas en cuestión de salud animal, siendo un animal que se encuentra en todo el territorio mexicano. Convive con las explotaciones animales y puede ser un factor que lleva un grado de diseminación de enfermedades. El aguililla de Harris en estado silvestre se alimenta de pequeños mamíferos y pequeñas aves, esto conlleva a tener un grado de alimentación versátil.
Estas aves tienen una gran demanda en el comercio negro esto repercute en el aprovechamiento y cuidados de estos animales, que al ser comprados de manera ilegal se pone en peligro no solo esta, si no, a muchas especies más.
Los estudios presentados en este trabajo son de gran importancia, es el preámbulo para poder diagnosticar alteraciones en el hospedero, la cetrería es utilizada desde hace miles de años para el manejo de las aves de presa como deporte y jerarquías de los nobles. (Pareja 1997)
La cetrería tiene por objetivo de realizar una cacería por medio de la relación entre el humano y el ave, esto lleva a tener en óptimas condiciones al ave utilizada para este fin. Pero puede presentar como consecuencia múltiples patologías entre la presa y depredador. (Aguilar, et al 1993 )
Material y Métodos
Para la realización de este trabajo fueron utilizadas siete aguilillas de Harris de diferentes edades, sexo, manejo, instalaciones y alimentación. Estas aves se encuentran en la zona metropolitana de la Ciudad de México, y se realizó en los meses de marzo y abril del presente año.
Cuadro. 1. Datos generales de las aves utilizadas en la investigación
| No. |
Sexo |
Edad |
Etapa
captura |
Alimentación |
Instalación |
| 1 |
H |
4.5 años |
Pasajera |
Pescuezo de pollo |
Percha |
| 2 |
H |
6 años |
Zahareña |
Pescuezo de pollo |
Percha |
| 3 |
M |
4 años |
Pasajera |
Pescuezo de pollo |
Percha |
| 4 |
H |
8 años |
Niega |
Conejo, codorniz y rata |
3x2.5x1.5 mtrs Jaula |
| 5 |
H |
12 años |
Zahareña |
Pescuezo de pollo |
Percha |
| 6 |
M |
1 año |
Pasajero |
Pescuezo de pollo |
Percha |
| 7 |
H |
3 años |
Entremudada
|
Pescuezo de pollo |
Percha |
Nota: Los animales cuando salen de cacería se alimentan de animales silvestres
Los análisis coproparasitoscópicos y hematológicos realizados en la presente investigación se llevaron a cabo en el laboratorio de Análisis Clínicos de la Universidad Autónoma Metropolitana unidad Xochimilco.
Se obtuvo una muestra de heces por cada ave por medio de estimulación de la cloaca, las cuales se recolectaron en envases estériles de vidrio y rotulados para su almacenamiento a una temperatura de 4C0 (Olivares, et al 2001)
Para la realización de los análisis coproparasitoscópicos existen múltiples técnicas, sin embargo en la presente investigación, fue utilizada la técnica de flotación.
Técnica de flotación (Cualitativa)
• Jarabe fenol (Solución azucarada de Sheather, con densidad de 1.235)
• Cloruro de sodio saturado (con densidad de 1.180 a 1.200)
• Sulfato de Zinc (con densidad de 1.180)
• Para poder efectuarse esta técnica usualmente(Rodriguez et al, 1987) se siguen los siguientes pasos:
• Deposite 2 a 5g de heces en un mortero
• Agregue aproximadamente 10ml de solución de flotación (sol. Sheather, sol. De cloruro de sodio saturada, sol. De Zinc) y macérela
• Filtre a través de un colador de malla fina a un tubo de centrifuga y complete el volumen con solución de flotación.
• Centrifugue durante 5 minutos a 1,500 rpm
• Tome mediante un asa de platino o el extremo de un agitador de vidrio una muestra de la superficie de la preparación de la porción central
• Deposite la muestra sobre una lámina porta- objetos
• Coloque un cubre- objetos encima
• Observe con objetivo seco de menor aumento
Otra forma de lograr concentración por flotación consiste en:
Mezclar en un mortero 2g de heces con 10ml de solución Sheather para homogenizarla, agregando solución hasta alcanzar 50ml
Mover cuidadosamente para obtener una suspención homogenea que se vierte a través de la malla o tamiz fino, apartando el residuo en otro baso de precipitado de 50ml
Deje en reposos de 2 a 5 minutos
Depositar sobre la superficie de la suspensión un cubre-objetos que se retira por medio de una pinza después de permanecer colocado de 3 a 5 minutos
Coloque el cubre- objetos sobre un porta- objetos para su observación bajo un microscopio óptico
Para el estudio hematológico se obtuvieron 7 muestras de sangre (1 ml) por cada ave, realizando la obtención del plexo braquial.
Dichas muestras se almacenan en tubos vacutainer que contienen anticoagulante (EDTA) los cuales fueron rotulados y almacenados a 4C0
Para su estudio se utilizo la solución Natt y Herric(Cambell, 1995)
Cuadro.2 .Natt y Herrick: Ingredientes para 1000ml
Na
Cl |
3.88g |
Na2
SO4 |
2.50g |
Na2
HPO4. 12 H2O |
2.91g |
KH2
PO4 |
0.25g |
Formailina
(37%) |
7.5 ml |
Azul
de metileno |
0.10g |
Técnica
De la muestra obtenida se lleno un capilar sin anticoagulante para la determinación de hematocrito realizando esta operación por cada muestra, las cuales fueron centrifugadas a 11, 000 rpm por 10 minutos, después se obtuvo el porcentaje celular por medio de una regla de tres, se determinaron proteínas plasmáticas de los capilares previamente centrifugados, determinados en el refractometro.
Se realizó el conteo total de leucocitos y eritrocitos en la cámara New Baver, utilizando previamente la solución de Natt y Henry en el llenado de las pipetas correspondientes.
El conteo fue realizado en los campos para leucocitos. Se realizó el frotis tiñendo con solución Wrigth – Giemsa Stain y se observó a microscopio para la identificación de hematíes
Resultados
Los resultados del estudio coproparasitoscópico no se encontró ningún agente patógeno que altere
al hospedador, esta puede ser ocasionada por el tipo de alimentación, instalación y manejo de las aves, algunos autores (Aguilar 1993, Nick 2003, (Ian 1993) establecen que existen parámetros que pueden afectar de manera significativa al ave, en la alimentación y el manejo para tener una infestación de agentes parasitarios lo cual no ocurre en el presente trabajo de investigación.
Cuadro.3. Resultado del análisis coproparasitoscópico de las aves
| Ave |
Coproparasitoscópico |
| 1 |
Negativo |
| 2 |
Negativo |
| 3 |
Negativo |
| 4 |
Negativo |
| 5 |
Negativo |
| 6 |
Negativo |
| 7 |
Negativo |
En el estudio hematológico se pudo realizar una observación de las células sanguíneas de las aves (eritrocitos y leucocitos), debido a que ambas células son nucleadas y la identificación resulta complicada, es necesario utilizar una solución especial llamada Natt y Henrrik (Kendall 2002, Shehata 2001, Campbell 1995)
Cuadro.4. Valores obtenidos en la hematología de las aves
| Ave |
Hematocrito |
Proteínas |
LeucocitosUL
EritrocitosUL |
| 1 |
30.58% |
3.9 |
65,340 |
4,440,000 |
| 2 |
30.96% |
3.9 |
32,120 |
9,010,000 |
| 3 |
30% |
4 |
122,540 |
8,420,000 |
| 4 |
30.31% |
3.7 |
34,760 |
14,530,000 |
| 5 |
31.53% |
4.25 |
53,680 |
4,630,000 |
| 6 |
25% |
4.1 |
21,120 |
9,660,000 |
| 7 |
28.75% |
4.5 |
102,520 |
6,760,000 |
| Prom.
Gral |
29.59% |
4.05 |
617,257 |
8207,142 |
Prom. M |
27.5 |
4.05 |
71,830 |
9,040,000 |
| Prom.
H |
30.426 |
4.05 |
57,684 |
7,874,000 |
| Desv
Est M |
1.82574186 |
0.07071068 |
71714.7697 |
876812.409 |
| Desv
Est H |
3.53553391 |
0.32015621 |
28565.4561 |
4157815.53 |
Discusión
El objetivo de esta investigación es la observación coproparasitoscópica y hematológica de manera general la cual sirve como antecedente para la realización de estudios posteriores.
La evaluación de eritrocitos y leucocitos de las aves se incluyen en el paquete celular, así como su morfología. Autores como; Parga et al .2003; mencionan que factores como el manejo en la obtención de la muestra sanguínea, así como otras causas pueden alterar la determinación de este estudio, tal como se manifiesta en los resultados obtenidos debido a que se pueden alterar los valores sanguíneos, presentándose leucopenia, linfopenia y eosinopenia, también se afecta la morfología en linfocitos y heterofilos.
Los parámetros alimenticios son factores que alteran el contenido de células sanguíneas y su morfología esta se manifiesta en disminución de estado nutricional y condición corporal (Wong et al . 2002).
En estudios anteriores manifiestan como normatividad que las alteraciones en condición corporal y estado nutricional determinan afecciones como anemias, inmunosupresión (Shehata 2001); estos factores pueden interferir en los análisis efectuados en este trabajo. En cuanto a los resultados obtenidos en el estudio hematológico se observa una menor cantidad de porcentaje de hematocrito de los machos respecto a las hembras; no siendo factor el tipo de alimentación en el caso de las proteínas plasmáticas no existe una diferencia entre ambos sexos. En el conteo de leucocitos se manifiesta una mayor cantidad en los machos que en las hembras; en la cuenta de eritrocitos el valor más elevado lo obtuvieron los machos como se ha mencionado en el cuadro 4. Estos factores muestran según la correlación nutrición-contenido celular, como indicador de afecciones o infecciones las cuales se determinan en estudios serológicos según sea el caso, Cooper, 2000, menciona la existencia de estos indicadores como la alternativa optima para el diagnóstico de patologías.
Conclusión
Los análisis efectuados de este trabajo de investigación se consideran necesarios para prevenir afecciones. Se tomo en cuenta las dificultades tales como manejo de las muestras y del ave misma, así como los factores externos (temperatura, edad, condición corporal del ave, etc.) por esto se toma en cuenta que los resultados presentados muestran un grado de confiabilidad óptimo, se tiene también la restricción de no contar con la información de parámetros clínicos de las aves de presa. Al término de esta investigación se concluyo que la diferencia de resultados varía de acuerdo a factores como sexo, edad de captura, estación reproductiva y estación del año así como la alimentación. Estos animales tienen gran demanda en el mercado negro que al ser adquiridas de manera ilegal se pone en riesgo la salud publica y de esta especie, debido a que no se les da un manejo adecuado ni alimentación satisfactoria y mucho menos las instalaciones necesarias que se requieren, así como la medicina preventiva que merece, ya que esta investigación beneficia a la conservación, preservación y estudio de estas aves
Agradecimientos
A la Universidad Autonoma Metropolitana-Xochimilco por la cooperación hacia con este proyecto.
Dr. Jesús Eduardo Morales Barrera Docente del módulo Equilibrio de los nutrientes para aves comerciales.
MVZ: Héctor Samuel Villalobos Bolán Laboratorista: Leticia Garcia Serralde. Personal de laboratorio de análisis clínicos, por el apoyo brindado en la realización de la investigación
Bibliografía
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Third Edition. Blackwell Science. Oxford, UK, 2002.
2. Humphrey a.p . Evans “Falconey “, ediciones, John Bartolomeu. 1978
3. Ian Newton, Penny Olsen “Aves de presa” editorial materia viva. 1993
4. Javier L Olivares, Jesús G Rodríguez, Saul Cortez, “ Técnicas helmintológicas veterinarias” UAM-X .2001
5. Manuel Diego Pareja Obregón de los Reyes “Cetrería y aves de presa” Noriega editores. 1997
6. Nickfox, “Comprender al ave de presa” ediciones Catrel 2003
7. Sergio Aguilar, J, Ambrosio Aguilar, Eduardo Jiménez “Manual básico de cetrería” Noriega editores 1993
8. Terry. W. Cambell “Avian Hematology and Cytology” 2da edición, Iowa State Press.1995
9. Dujuwich Mauricio, Mazet Jonna K. Zuba Jeffrey. R, “Hematologyc and Biochemical reference ranges for the California condor (Gymnogypes californianus)”
10. Harry Kendal, E. Clinical Chemistry of Companion Avian Species, Veterinary Clinical Pathology, 31(3), 2002, pp. 223-230
11. Parga , M, L, MVB, MSC, MRCUS, Pendl, H, MVB and Neil A. Forbes, The effect of transport on hematology parameters in trained and untrained Harris Hawks) and peregrine falcons) Journal of Avian Medicine and Surgery, 15(3), 2003 pp. 162-169
12. Shehata, A, Assiut, Morphological Study of red blood Cells as a tool for animal identification, Assiut Veterinary Medical Journal 45(89), 2001, pp 326-335
13. Suzán Azpiri Gerardo, Galindo Maldonado, Francisco, Ceballos Gonzales Gerardo, La importancia del estudio de las enfermedades en la conservación de fauna silvestre, Vet . Mex 31(3), 2002 pp 223-230
14. Wong Emiko, Desmoyers M, Miraelia Igor Fitzgerald Guy, Pansteatitis in a free-ranging red-tailed, Hawk (Buteo Jamaicencis) 30(4) 2002, pp 584-586
Anexos
Fotografía de eritrocitos obtenida de literatura
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Fotografía de leucocitos obtenida de literatura
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Fotografía de eritrocitos tomada en el lab. De la UAM-X
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Fotografía de leucocitos tomada en el lab. De la UAM-X
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Preparación de la solución para el análisis coproparasitoscópico
| *Azúcar
de caña |
1200g |
| Fenol puro |
2ml |
| H2O |
1000ml |
| -H2O
Corriente |
1000ml |
| Na Cl
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Agregar hasta la saturación |
| Densidad |
1.200 |
| +3nSO4 |
331g |
| H2O
Destilada |
1000ml |
| Densidad |
1.18 |
*Solución azucarada de Sheatner densidad de 1.235
- Cloruro de sodio saturada densidad 1.800-1.200
+Sulfato de Zn densidad 1.80
oscar orlando escobedo correa (falcoperegrinus2002)
